Nachweis toter Hyphen mittels Methylenblau
Für diesen Test wurde Methylenblau der Firma Sigma (zinkfrei, Lot: 100F-02535) verwendet. Der Farbstoff wurde in Wasser gelöst, und nachstehende Konzentrationen wurden eingesetzt: 10.000µg/ml (1:100), 1.000µg/ml (1:1.000), 400µg/ml (1:2.500), 200µg/ml (1: 5.000), 133µg/ml (1:7.500), 100µg/ml (1:10.000),... 4µg/ml (1:250.000), 2 µg/ml (1:500.000) (vgl. für diesen Test
Abschnitt 1.2.2).Zur Untersuchung des Mycels wurden Zupfpräparate angelegt, mikroskopiert und die Ergebnisse fotografisch festgehalten (s. Abschnitt
2.5.1 für weitere Materialien). Die Ergebnisse wurden dann mit den Phasenkontrast-Aufnahmen lebender Hyphen verglichen. Untersucht wurden zunächst lebende Grundhyphen der Wachstumszone, dann durch Hitze abgetötete.Nachweis von Oxalsäure
Für diese von Bruhn (
1993) beschriebene Methode wurden Luftmycelien von S. lacrymans oder Coniophora puteana mit einem pH-Indikator versetzt. Der aus Bromphenolblau (Merck, Lot: 46191) und Bromkresolgrün (Merck, Lot: 7392058) (jeweils eine 0,4% alkoholische Lösung) bestehende Indikator wurde mit 50 ml Wasser versetzt und auf Reagenzgläser verteilt. In ca. 2 ml dieser Lösung wurden die Luftmycelien getaucht und 1 -2 Stunden inkubiert. Die dabei verwendete Mycelmenge entsprach der einer halben Petrischale nach 3 bis 6 Wochen Wachstum (Bruhn macht für dieses Verfahren keine Mengenangabe).Der Test wurde mit 14 Stämmen durchgeführt (Arten und Stämme siehe
Abschnitt 2.2.1). Dabei wurden je Stamm zwei parallele Ansätze verwendet. Zur Kontrolle diente zehn Jahre altes, totes Mycel von S. lacrymans.Autor: T. Huckfeldt